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採血方法

• 患者確認
• 空腹状態の確認
• 患者の腕をテーブルの上(心臓と同じ高さ)に乗せ、穿刺する部位の上部に駆血帯を巻き付けます。
• アルコール綿で採血部位を消毒し、アルコールを乾かします。(アルコールが乾かないと検体溶血の原因になりますのでご注意ください。)
• 注射針を15°の角度で肌に穿刺します。
  • 注射器
    • プランジャーをゆっくり引いて採血します。急いで引くと溶血を引き起こすことがあります。
    • 真空採血管ほどの充分な量を採血してください。
  • 真空採血管
    • ホルダーを固定させ、採血管を押し込みます。採血が終ったら慎重に取り外します。
    • 連続で採血する場合、ホルダーから最初の採血チューブを取り外した後、2本目のチューブをホルダーに差し込んでください。
    • 採血管が差し込まれている間は絶対に血管から針を抜いてはいけません。
• 採血が始まると駆血帯を外します。
• 針を抜いて、採血部位を圧迫します。
  • 過度な出血(5分以上)や血清容器の血液が凝固されない場合は医師に知らせて必要な措置を取ってください。
  • 使用済みの注射針は必ず注射針専用回収ボックスに捨ててください。
• 抗凝固剤と血液がよく混ざるようにすぐ反転させてください。

Inverting

Mixing 1 time

채혈에대한 정보를 제공하는 표입니다.

採血管名	色	検査	ミキシング	添加剤
Sodium Citrate		PT/aPTT、特殊凝固検査、凝固因子	4回	3.2% Sodium Citrate
Plain		血液型、薬物	5回	Clot activator
SST		生化学、血清学	6回	Clot activatior & Acrylic gel
PST		救急生化学	8回	Lithium heparin & gel
Heparin		血液ガス	8回	Heparin
EDTA		血液検査	8回	Spray-dried K2 EDTA
Glucose		グルコース検査	8回	Sodium Flouride & Na2 EDTA
NK Vue		NK細胞活性度検査	10回	NK Cell activator
STANDARD ETB-feron		潜在性結核検査	10回	CFP-10, ESAT-6, TB7.7

採血順番

分離及び保管

• 血液が真空採血管(SST)の壁面に塗布されたClot activatorによって充分凝固できるように軽くミキシングした後、30分から1時間程度常温に立てて置きます。
  • 血清が分離される前の全血状態で冷蔵保管(4℃)すると、1時間に約0.2mmol/L程度の血清カリウムが増加するため、血清が分離するまでは必ず常温(15-25℃)で保管してください。
• 凝固された血液状態で2時間以内に遠心分離機を使って1300-2000RCF(g)で10分間血清を分離します。
  • 遠心分離機が用意できない場合は、30分から1時間程度常温で凝固させた後、上層に分離された血清を迅速に分離してください。
• 分離後は冷蔵保管してご依頼ください。

よくある不適切な末梢血塗抹標本

• 血液の肉眼確認

  • 

    スライドガラスに触れたスプレッダースライド(spreader slide)の接触面が欠けているか粗い場合

  • 

    塗抹の速度が不規則な場合

  • 

    スプレッダースライドの面に血液が充分広がっていない場合

  • 

    スライドガラスに落とした血液の量が足りない場合

  • 

    血液がスライドガラスの幅に合わせて広がっていない場合

  • 

    スライドガラスが清潔でないか、油っぽい場合(血液内の脂質成分が多い場合)

  • 

    スライドガラスとスプレッダースライドの間の圧力が一定ではない場合

  • 

    血液を落としてから塗抹までの時間が長い場合
• 不適切な標本の血球形態
  • 乾燥遅延、またはスライド標本表面の湿気によるアーチファクト
    • 問題点：赤血球形態の観察が不可
    • 解決方法：塗抹後、直ちに乾燥させ、スライド標本の表面が湿気に晒されないようにします。
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  • ホルマリンガスによるアーチファクト
    • 問題点：ライト染色後、スライド標本が濁って青く変化
    • 解決方法：スライド標本をビニール袋の中に入れて露出を最小限にし、組織検体とは分離保管します。
    • 
    • 

感染管理培養検査

• 内視鏡スコープのエア・ウォーター及び吸引シリンダーを滅菌蒸留水を付けた輸送用培地で2～3回スワブして検体を収集してください。

水の培養検査

• 滅菌容器(conical tube)に無菌的に採取して5cc以上入れてください。

細胞病理検査

• 細胞検査用の検体
  • 検体採取の前日は膣内の治療や避妊薬などの使用はお控えください。検体採取前に外傷の治療や生検などを行った場合、血液がスライド標本に塗抹されて判読が難しくなるのでお控えください。
  • 検体はサイトブラシを用いて充分な量を採取してください。
  • 検体は採取してからスライドガラスに薄く均一に塗抹し、細胞変性を防ぐため95%エタノール、またはサイトスプレーなどのコーテイング固定液(coating fixation)で固定します。
  • 検体容器に受検者の氏名、番号、依頼先などの情報を必ずご記入ください。
  • 検体の採取後、検体容器のキャップをしっかり閉めて検体の流失を防ぎます。
• 一般子宮膣塗抹検査用の検体
  • 一般子宮膣塗抹検査の固定
    • 塗抹されたスライド標本は直ちに95%エタノールに漬けて少なくとも30分以上固定します。(メタノールは使用禁止)
    • 充分固定されたスライド標本は完全に乾燥させてから輸送用PAPボックスに入れます。(塗抹されたスライド標本の場合、湿気やホルマリン成分によって細胞変性を引き起こすことがあります。)
    • 輸送用PAPボックスの中に除湿剤を入れて残った湿気を取り除くことを推奨します。
    • 毎日業務終了後、使用した95%エタノールは廃棄して、固定用容器はきれいに洗浄して乾燥させます。
    • 検査開始前に乾燥させた固定用容器に新鮮な95%エタノールをスライドガラスが充分浸かる量を注いで使用します。
    • 検査中に95%エタノールが揮発しないように固定用容器のキャップを閉めて使用します。
    • 輸送用PAPはジッパーバッグに入れて密封した後、揺れないように袋に固定させて依頼します。
    • 土曜勤務者及び担当者の変更がある場合は上記の事項を必ず引き継いでください。
• 液状化細胞検査用の検体
  • 子宮頸部液状化細胞検査
    • 潤滑剤を付けず、子宮鏡を使って子宮頸部の細胞をブラシで採取します。
    • ブラシを保存液容器に入れて2-3回充分揺らした後、使用したブラシは廃棄します。
• 一般子宮膣塗抹検査の固定

  固定良好

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  固定不良

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• 液状化細胞検査の処理方法
  • 婦人科の検体
    • 各ブラシで採取した検体をPreservCyt保存液の瓶に入れて、底面にブラシが曲がって広がるように10回以上押しながら充分回転させて検体をすべて振り落とした後、ブラシは廃棄してください。
      (ただし、三角ブラシのブラシの部分は容器の中に入れないでください。)
  • 尿(Urine)及び喀痰(Sputum)
    • 液状輸送用容器に新鮮な検体50mlを入れます。
  • 穿刺吸引法(FNA)
    • 採取した検体を液状輸送用容器に直接入れます。
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  吸引後、シリンジニードルを分離し、チューブの中に入っている保存液(CytoLyt®solution)をシリンジの中に吸引してから再度チューブの中に入れます。

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  ニードルをシリンジに再度取り付け、保存液容器の壁面に密着させて優しく検体を入れます。保存溶液を再度吸引して入れる過程をくり返します。